Stock solutions



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Recipes for Stock Solutions

 * 1) Ammonium Persulfate (10%)
 * 2) *1 g container
 * 3) *10 ml ddH2O
 * 4) *dissolve and divide into 1 ml aliquots
 * 5) *freeze at -20
 * 6) Aprotinin (2 mg/ml)
 * 7) *10 mg container
 * 8) *5 ml ddH2O
 * 9) *dissolve into small vial
 * 10) *cover in alum. foil
 * 11) *store at 4 degrees
 * 12) Coomassie Destaining Sol’n
 * 13) *30 % methanol
 * 14) *10 % acetic acid
 * 15) *ddH2O
 * 16) Coomassie Staining Sol’n (can be reused)
 * 17) *0.25 g coomassie Brilliant Blue R250
 * 18) *90 ml methanol: H2O (1:1 v/v)
 * 19) *10 ml acetic acid
 * 20) EDTA (0.5 M)            500 ml sol’n
 * 21) *73 g EDTA
 * 22) *ddH2O
 * 23) *Use ~35 g NaOH chips to dissolve all EDTA
 * 24) *pH 8.0
 * 25) EGTA (0.5 M)            100 ml sol’n
 * 26) *23.4 g EGTA
 * 27) *ddH2O
 * 28) *pH 8.0
 * 29) HEPES (1 M)            100 ml sol’n
 * 30) *24 g HEPES
 * 31) *ddH2O
 * 32) *pH 7.4
 * 33) KCl                          100 ml sol’n
 * 34) *7.5 g KCl
 * 35) *ddH2O
 * 36) Laemmli Buffer (5X)  8 L sol’n
 * 37) *125 mM Tris-- 121 g
 * 38) *960 mM Glycine-- 576 g
 * 39) *ddH2O
 * 40) *(SDS to be added individually to 0.1% of total sol’n)
 * 41) Leupeptin
 * 42) *5 mg container
 * 43) *1000 ul ddH2O
 * 44) *dissolve and divide into 100 ul aliquots
 * 45) *freeze
 * 46) MgCl2 (1 M) 1 L sol’n
 * 47) *203 g MgCl2
 * 48) *ddH20
 * 49) NaH2PO2-H2O (1 M)   500 ml sol’n
 * 50) *69 g NaH2PO4-H20
 * 51) *ddH2O
 * 52) Na3VO4 (200 mM)       100 ml sol’n
 * 53) *3.6 g Na3VO4
 * 54) *ddH2O
 * 55) Pepstatin (1 mg/ml)
 * 56) *10 mg container
 * 57) *10 ml methanol
 * 58) *dissolve and divide into 1 ml aliquots
 * 59) *freeze
 * 60) PIPES (1M)                 100 ml sol’n
 * 61) *38 g PIPES
 * 62) *ddH2O
 * 63) *pH 6.8
 * 64) PMSF
 * 65) *1 g container
 * 66) *30 ml isopropanol
 * 67) *dissolve (must be vortexed a great deal)
 * 68) *cover in alum. foil
 * 69) *store at room temp.
 * 70) Ponceau S                   200 ml sol’n
 * 71) *1- 20 ml bottle Ponceau S Concentrated
 * 72) *180 ml ddH2O
 * 73) 2X Protein Sample Buffer
 * 74) *2 M Tris, pH 6.8 --6.2 ml
 * 75) *20% SDS --20 ml
 * 76) *Glycerol --20 ml
 * 77) *Bromophenol Blue --20 mg
 * 78) *ddH2O --54 ml
 * 79) *To Use: add 20% BME to volume of sample buffer needed (make fresh as needed)
 * 80) Stripping Buffer (to strip and reprobe a filter)  50 ml sol’n
 * 81) *62 mM Tris, pH 6.8 --1.5 ml
 * 82) *2% SDS --5 ml 20% SDS
 * 83) *0.7 ml BME/ 100 ml --350 ul
 * 84) *ddH2O
 * 85) TAE (50 X)                  1 L sol’n
 * 86) *242 g Tris
 * 87) *57.1 ml acetic acid
 * 88) *100 ml 0.5 M EDTA (pH 8.0)
 * 89) *ddH2O
 * 90) *(dilute to 1 X before use)
 * 91) TBS (10 X)                  5 L sol’n
 * 92) *500 mM Tris --302.5 g
 * 93) *1.5 M NaCl --437.5 g
 * 94) *ddH2O
 * 95) *pH 8.0
 * 96) TBS/ 5% BSA              20 ml sol’n
 * 97) *2 ml 10X TBS
 * 98) *18 ml ddH2O
 * 99) *1 g BSA
 * 100) TBS- Tween Sol’n
 * 101) *500 ml 10 X TBS
 * 102) *4.5 L ddH2O
 * 103) *5 ml Tween 20
 * 104) Transfer Buffer (for Protein Gels)  2 L sol’n
 * 105) *28.5 g glycine
 * 106) *6.1 g Tris
 * 107) *ddH2O